MMRN1

这些结果表明了来自早期发育阶段的细胞外基质（ECM）可能对脊髓的显著再生能力有重要贡献，从而为成人脊髓损伤的治疗带来了新思路。 中国科学院遗传与发育生物学研究所戴建武、赵燕南团队（博士生孙政为论文第一作者）在 Cell Stem Cell 期刊发表了题为：Harnessing developmental dynamics of spinal cord extracellular matrix improves regenerative potential of spinal cord organoids 的研究论文。 该研究利用多组学技术全面描绘了脊髓细胞外基质（ECM）的发育动态变化，揭示了发育早期的脊髓ECM蛋白在调控脊髓神经干细胞和脊髓类器官再生中发挥重要作用。这些发现促进了我们对神经再生的理解，也为将来开发脊髓损伤（SCI）新疗法提供了新思路。 驱动新生期的再生能力机制可能涉及祖细胞、细胞外基质（ECM）、免疫调节等因素。几十年前，研究人员发现新生儿脊髓具有再生潜力，但其确切机制仍不清楚。此前，中枢神经系统（CNS）再生的一个公认障碍是髓磷脂相关蛋白和瘢痕相关分子组成的抑制性微环境。然而，减弱这些抑制性分子并没有在脊髓损伤修复中取得满意的结果。 2020年，哈佛大学何志刚团队在 Nature 期刊发表论文，揭示了新生小鼠无瘢痕脊髓修复是通过小胶质细胞分泌的细胞外基质（ECM）纤连蛋白（fibronectin，FN）实现的。这突显了新生期脊髓环境ECM对组织再生的重要性。 组织脱细胞技术已成为一种有前途的细胞外基质（ECM）获取技术。通过去除细胞成分并保留组织特异性的ECM成分，脱细胞技术已被用于各种生物医学应用。然而，脊髓ECM的发育特异性功能尚未被报道。在这项研究中，研究团队探讨了早期发育阶段（新生或胚胎）和成年阶段脊髓ECM的功能。 该研究发现，与成年阶段脊髓相比，早期发育阶段的脊髓具有更高的与神经发育和轴突生长相关的细胞外基质（ECM）蛋白水平，而具有较少的抑制性ECM蛋白水平。研究团队分别获取了新生兔脱细胞脊髓细胞外基质（DNSCM）和成年兔脱细胞脊髓细胞外基质（DASCM），结果显示，二者之间保留了上述差异， 此外，DNSCM比DASCM更有效地促进了神经前体细胞（NPC）的增殖、迁移和神经分化，并促进了脊髓运动神经元类器官（scMN-Organs）的轴突生长和再生。通过蛋白组学分析，研究团队确定了DNSCM中的多效生长因子（Pleiotrophin，PTN）和腱糖蛋白（Tenascin，TNC）在其中发挥了关键作用。 更重要的是，在脊髓损伤小鼠模型中，DNSCM促进了神经前体细胞（NPC）移植后的增殖、迁移和神经元分化，还促进了脊髓运动神经元类器官（scMN-Organs）移植后的成熟、神经突延伸和神经投射。总的来说，DNSCM与NPC/scMN-Organs协同增强了脊髓损伤后的运动功能恢复。 这些结果表明了来自早期发育阶段的细胞外基质（ECM）可能对脊髓的显著再生能力有重要贡献，从而为成人脊髓损伤的治疗带来了新思路。

本文为转化医学网原创，转载请注明出处 作者：Jerry 导读： 细胞不断感知和响应微环境中的生化和生物力学变化，需要动态代谢适应。ECM硬化是癌症侵袭性的标志，而底物剥离下的生存也与不良预后相关。 近日，北京大学研究人员在权威期刊《Advanced Science》上发表了题为“mTORC1 Mediates Biphasic Mechano-Response to Orchestrate Adhesion-Dependent Cell Growth and Anoikis Resistance”的研究论文，本文中，研究人员报道了一种整合素- gsk3 β- fto - mtor轴，它可以整合刚度感知，以确保刚性底物赋予的生长优势和基质剥离下细胞的抗死亡能力。研究表明，底物硬化可以通过整合素和GSK3β-FTO介导的mRNA m6A修饰激活mTORC1，提高mTOR水平，促进合成代谢。在ECM脱离时抑制这条轴增强了自噬，这反过来又传递了肿瘤细胞对肿瘤的弹性，正如在人乳腺导管原位癌(DCIS)和小鼠恶性腹水中所证明的那样。 总的来说，这些结果强调了细胞代谢的双相机制调节，在诸如纤维化等硬化条件下的肿瘤生长以及癌症转移期间的抗氧化性中具有重要意义。 https://onlinelibrary-wiley-com.libproxy1.nus.edu.sg/doi/10.1002/advs.202307206 研究背景 01 细胞通过整合素结合的黏着斑(FAs)来感知ECM的物理特性，从而影响细胞的迁移、分化和存活。由于组织纤维化和细胞外基质硬化与肿瘤的不良预后相关，因此通过胶原消耗或赖氨酰氧化酶(LOX)抑制来改变细胞外基质刚度，或通过药物改变细胞力学转导已成为有前景的癌症治疗选择。然而，肿瘤细胞也表现出对失巢凋亡(ECM脱离诱导的细胞死亡)的抵抗。 肿瘤细胞如何在坚硬的基质上获得生长优势，同时在基质脱离后抵抗细胞死亡仍然是一个谜。 细胞生长和增殖与细胞合成代谢密切相关。耐氧性也与代谢适应同时发生，可被自噬所阻碍。雷帕霉素复合体1 (mTORC1)的机制靶点是响应细胞内和细胞外信号的代谢调节的中心支柱。它的激活与增强蛋白质翻译和减少自噬有关。mTORC1被招募到溶酶体表面释放其抑制作用。最近的研究表明，溶酶体mTORC1可以被运输到FAs周围并被激活，FAs是连接ECM与细胞内部的基于整合素的机械转导中心。然而，仍然缺乏证据表明基质的物理性质是否可以信号传导到mTORC1通路。 研究进展 02 机械力广泛参与各种生物过程，包括细胞增殖、分化和迁移需要代谢重组。作为合成代谢的主要调节因子，mTORC1一直是细胞生长和肿瘤生存研究的重点，然而，其与机械微环境的关联在很大程度上缺失。 基于整合素的FAs是一种动态蛋白复合物，介导肌动蛋白细胞骨架与ECM的结合，并通过经典的机械转导途径在功能上参与细胞极化、扩散和迁移。最近的证据表明生长因子受体和氨基酸转运蛋白在FA位点的分布。此外，在FA富集的细胞区域也发现了本地化的蛋白质翻译。在机械传感方面，FAs的新作用将被揭示。在这里，研究人员发现mTOR和phos-S6可以通过整合素- fa位点的局部激活来促进细胞增殖和抑制自噬。这种激活依赖于底物感知、细胞收缩以及整合素β1。这些观察一致表明了整合素共轭FAs在调节细胞代谢中的作用。 研究人员鉴定了fto - m6A去甲基化酶之一，它对mTOR mRNA和随后的蛋白丰度的机械调节至关重要。近年来，FTO的翻译后修饰(PTMs)受到越来越多的关注。据报道，150个磷酸化位点显著改变了FTO的亚细胞定位和底物特异性。此外，蛋白激酶Cβ (PKCβ)的磷酸化引导FTO参与泛素介导的蛋白降解。在本研究中，研究人员发现丝氨酸256位点的磷酸化阻碍了FTO的催化活性，但不影响其亚细胞定位或蛋白丰度，表明PTMs通过多种方式影响FTO。不同硬度下FTO活性改变的一种可能性是，磷酸化通过先前报道的Ca2+结合增强来修饰FTO活性。另一种可能是磷酸化状态通过影响FTO的寡聚化来改变其活性，然而，由于FTO结构的复杂性和技术的局限性，确定二聚化对FTO催化活性的确切影响并不容易。 本研究揭示了mTORC1通路的机械激活可能在硬度促进细胞生长和抗失巢凋亡方面发挥双重作用。增加的基底刚度或细胞张力增强了mTORC1的激活，维持细胞增殖和合成代谢。而ECM脱离则使mTORC1信号失活，并通过提高自噬促进细胞存活。 肿瘤细胞如何利用这一机制在力学-微环境的变化中前行，以及这一通路如何有助于靶向治疗，有待未来的研究。 底物刚性通过mTORC1途径调节自噬 研究结论 03 综上，研究人员发现了mTORC1途径在坚硬基质或底物脱离时的机械调节现象和潜在机制。研究结果表明，肿瘤细胞利用细胞代谢的双相机械调节来协调细胞在坚硬基质上的生长和在底物脱离时的抵抗。靶向整合素- gsk3 β- fto - mtor轴可能揭示癌症的双重打击策略。 参考资料： https://onlinelibrary-wiley-com.libproxy1.nus.edu.sg/doi/10.1002/advs.202307206 注：本文旨在介绍医学研究进展，不能作为治疗方案参考。如需获得健康指导，请至正规医院就诊。 热门·直播/活动 🕓 北京｜12月19日-20日 ▶第四届单细胞测序技术应用研讨会暨单细胞&空间组学研讨会（日程稍后公布） 点击对应文字 查看详情

摘要嵌合抗原受体-T（Chimeric antigen receptor-T，CAR-T）细胞疗法是一种革命性的过继性细胞疗法，它可以改造T细胞并将其重新定向到特定的肿瘤细胞。自CAR-T细胞疗法于2017 年首次获准用于B细胞衍生恶性肿瘤以来，它在血液肿瘤领域取得了前所未有的进展，近年来，它极大地重塑了癌症治疗的格局。目前，累积的证据表明，CAR-T细胞疗法可以成为实体瘤的可行治疗策略。然而，由于肿瘤微环境（TME）的免疫抑制作用和肿瘤抗原的异质性，CAR-T细胞疗法在实体瘤中的应用需要绕过更多具有挑战性的障碍。乳腺癌具有侵袭性强、恶性程度高、预后差的特征。本综述强调了CAR-T细胞疗法在乳腺癌中的基本靶点，总结了与CAR-T细胞疗法相关的挑战，并提出了应对这些挑战的策略，为乳腺癌治疗提供了一种新方法。引言根据2020年最新的全球癌症统计数据，乳腺癌已超过肺癌，成为最常诊断出的癌症。约有230万新确诊病例和68万死亡病例。乳腺癌因其恶性程度高、预后极差，严重威胁着妇女的健康。根据雌激素受体（estrogen receptor, ER）、孕激素受体（progesterone receptor, PR）和人类乳腺癌受体（human epidermal receptor 2, HER2）的表达水平，乳腺癌可分为以下亚型:基底样乳腺癌、管腔A型乳腺癌、管腔B型乳腺癌、三阴性乳腺癌（triple negative breast cancer, TNBC）和HER-2扩增亚型。手术、化疗和放疗仍是乳腺癌的主流治疗手段。治疗后乳腺正常组织受损、复发、转移等致命并发症严重制约了乳腺癌的治疗效果。曲妥珠单抗等靶向疗法的不断临床应用使HER2阳性乳腺癌患者预后得到改善，不良反应更少。然而，由于靶向疗法的分子特异性，其总体治疗效果仍然有限，因此迫切需要替代疗法。TME由肿瘤细胞、免疫细胞、间充质细胞、分泌的趋化因子和免疫细胞组成、 免疫细胞、间充质细胞以及分泌的趋化因子和细胞因子组成，共同调节肿瘤细胞的生理过程。近几十年来，TME在肿瘤发生过程中的调控机制已被阐明，肿瘤浸润免疫细胞在TME中发挥着重要作用。基于免疫检查点如程序性死亡-1/程序性死亡配体-1（programmed death-1/programmed death ligand-1，PD-1/PDL1）和细胞毒性T淋巴细胞相关抗原4（cytotoxic T-lymphocyte-associated antigen 4，CTLA4）的免疫疗法已广泛应用于多种肿瘤。抑制免疫检查点可以阻断免疫细胞中的免疫抑制信号，激活免疫细胞识别并消灭肿瘤细胞。肿瘤细胞。免疫疗法在肺癌、黑色素瘤和肾细胞癌中取得了令人满意的临床治疗效果，振兴了癌症治疗领域。CAR-T细胞是人工制备的T细胞，其表面表达一种合成的肿瘤细胞特异性受体。CAR-T细胞的制备过程如图1所示。T 细胞最初从外周血单核细胞中分离外周血单核细胞中分离出来，并用慢病毒转染以表达CAR。经修饰的CAR-T细胞随后在体外扩增，并回输到患者体内。CAR-T细胞可以识别特定的肿瘤抗原抗原，激活免疫反应，最终消除肿瘤细胞。CAR-T细胞疗法在治疗血液肿瘤方面取得了治疗血液肿瘤取得了令人瞩目的成就。自2017年以来美国食品和药物管理局已批准六种CAR-T细胞用于血液肿瘤治疗。（图2）CAR-T细胞疗法对血液恶性肿瘤的显著效果，促进了它在包括乳腺癌在内的实体瘤中的应用。在这篇综述中，我们介绍了新型CAR-T细胞工程策略，总结了乳腺癌中的潜在靶点和临床试验，并讨论了CAR-T细胞疗法面临的挑战和CAR-T细胞疗法的工程策略。图1 工程化CAR-T细胞制造流程图。首先，从患者身上抽取血液样本。其次，从人血液样本中分离并收集T细胞。然后，将慢病毒转染到患者的T细胞基因组中，促进T细胞表达人工修饰的car。最后，设计的CAR-T细胞在体外大量扩增并注射到肿瘤患者体内。 CAR的构建 CAR 根据其结构和功能分为四个主要部分结构和功能，包括：抗原结合结构域、铰链结构域、跨膜结构域和一个细胞内信号域。具体结构如图3所示。在CAR的开发过程中优化四个结构域可以显著增加在肿瘤治疗中的安全性和有效性。抗原结合域位于CAR-T细胞的细胞外膜上，主要作用是识别肿瘤抗原和将识别到的抗原信号转导到细胞中。抗原结合区是一个单链可变片段（single-chain variable fragment，scFv），由可变的重链和链接了Gly4Ser肽的轻链抗体组成，是CAR中最常见的连接子。scFv序列通常是源自小鼠或人类的单克隆抗体的一部分。目前，更小的天然的克隆抗体（纳米抗体）也被设计用于scFV序列。该结构域能识别细胞肿瘤特异性抗原并激活T细胞，它与主要组织相容性复合体（major histocompatibility complex，MHC）分子无关。它为克服肿瘤细胞中MHC分子下调导致的免疫逃逸提供了一种方法。抗原结合区的识别能力和亲和力直接影响CAR-T细胞的抗肿瘤效果。铰链区负责连接细胞外抗原结合域和细胞膜的跨膜区域。它为抗原结合域提供了灵活性，以应对与肿瘤细胞结合时的空间障碍。使得CAR-T细胞就能更容易地识别肿瘤细胞并与之相互作用。跨膜结构域连接CAR-T细胞的胞内和胞外结构域，将CAR的基本结构固定在细胞膜上。Ⅰ型蛋白是跨膜区的主要成分，如CD3ξ、CD4、CD28或者CD8α。Savoldo等人发现相比于含有CD3ξ的跨膜结构域，含有CD28的跨膜结构域结构更加稳定。细胞内信号结构域是 CAR 的细胞内定位成分，通常由激活结构域和共刺激结构域组成。激活结构域和共刺激结构域。肿瘤抗原的识别信号传递给CAR-T细胞，激活胞内信号结构域，促使T细胞消灭肿瘤细胞。CAR的大多数激活结构域来源于基于酪氨酸活化模体的CD3ξ免疫受体。然而，仅靠CD3ξ传递的激活信号还不足以诱导T细胞产生持久的免疫反应。因此，在CAR的结构中引入了OX40、CD27、CD28、4-1BB或ICOS等共刺激结构。研究发现，激活共刺激结构域可通过产生IL-2等细胞因子，显著提高CAR-T细胞的抗肿瘤效果和持久性。图2 FDA批准CAR-T细胞用于肿瘤治疗的过程 CAR-T 细胞疗法的发展 随着生物技术的进步，CAR-T细胞已经发展了几代。发展过程如图3所示。图3 CAR-T细胞的基本结构图和从第一代到最新一代CAR-T细胞的发展流程图。CAR-T细胞的基本结构由细胞外肿瘤抗原结合域、铰链域、跨膜域和细胞内信号域组成。第一代CAR-T细胞仅包含CD3z胞内信号域。第二代或第三代CAR-T细胞在上一代CAR-T细胞的基础上增加了一个或多个共刺激分子。下一代CAR-T细胞应用了多种新的工程策略，包括双特异性car、开关、纳米抗体、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶9和细胞因子途径第一代CAR-T细胞仅通过CD3z结构域的胞内区域传递激活信号。由于缺乏共刺激信号导致CAR-T细胞死亡较快，它们在临床试验中的疗效有限。在上一代CAR-T 细胞构建的基础上，第二代CAR-T细胞加入了共刺激信号结构域4-1BB或CD28。两种信号共同激活大大提高了CAR-T细胞的肿瘤杀伤效力和持久性。多项临床试验证实，靶向CD19的第二代CAR-T细胞在 B 细胞急性淋巴细胞白血病（B-cell acute lymphoblastic Leukemia，B-ALL）治疗中取得了显著的临床疗效。此外，为了进一步提高CAR-T细胞的活化能力，第三代CAR-T细胞设计了额外的共刺激信号分子的。这一代CAR-T细胞通常使用 CD27、CD28、ICOS、4-1BB 和 OX40 等成本刺激信号分子，其抗肿瘤疗效优于前代产品。第三代CAR-T细胞已成为构建CAR 结构的主要广泛应用技术。NKG2D带有CD27或4-1BB共刺激信号分子的CAR-T细胞可以在没有 IL-2的情况下促进CAR-T细胞的扩增和自我富集，从而有效提高识别和消除乳腺癌的能力。靶向表皮生长因子受体CAR-T细胞含有CD28、4-1BB和CD3ξ共刺激信号分子对肿瘤有很强的抑制作用。此外，人们还开始采用一些新的策略来寻找治疗效果更好、不良反应最小的 CAR-T 细胞疗法。研究发现，CD28 可促进细胞因子分泌，4-1BB可增加T细胞增殖，CD27可提高T细胞存活率。第四代靶向FRα CAR-T细胞含有共刺激域CD28、4-1BB和CD27，由于这三个共刺激域的综合优势，对乳腺癌具有更优越的疗效。开关结构包括与肿瘤抗原特异性结合的Fab分子和与CAR-T细胞特异性结合的肽表位。CAR-T细胞只与开关的肽表位结合，而不与内源性组织或肿瘤细胞上的抗原结合。因此，识别和激活过程严重依赖于开关的存在。与传统的CAR-T治疗相比，这种开关策略可以通过控制 CAR-T 细胞的活性和细胞因子的释放来减少不良反应的发生。在单链CAR结构中设计两个配体结合域是一种更有效识别肿瘤细胞的策略。CAR可识别两种不同的肿瘤抗原， 其中任何一种都足以激活T细胞。这种激活模式明显提高了识别肿瘤细胞的效率。在Yang等人的研究中，一种二价串联CAR（TanCAR）旨在同时靶向CD70和B7-H3，从而增强了抗肿瘤功能，改善了乳腺癌抗原异质性和变异性问题。信号传输结构域是目前CAR中的新结构域，可能是除共刺激结构域之外激活 CAR-T 细胞功能的另一个重要信号。Kagoya等人设计了新一代CAR-T细胞，与传统CAR- T细胞相比，它增加了一个新的信号分子域。该信号结构域由IL-2受体β链和STAT3结合酪氨酸-X-X-谷氨酰胺（tyrosine-X-X-glutamine，YXXQ）模体构建而成。与传统的CAR-T细胞相比，这些新型CAR-T 细胞能通过激活JAK激酶和STAT3/STAT5转录因子信号通路，提高增殖、抗肿瘤能力和持久性。 CAR-T细胞在乳腺癌中的治疗靶点 在实体瘤中，CAR-T 细胞的构建更为复杂，靶向肿瘤特异性抗原的识别是 CAR-T 细胞疗法面临的重要挑战。多年来，一些肿瘤表面抗原已被确定为乳腺癌 CAR-T 细胞疗法的治疗靶点。在接下来的章节中， 我们将总结CAR-T 细胞治疗乳腺癌靶点的一些最新进展。此外，表1列出了总结的靶点信息。瘤细胞特异性受体。CAR-T 细胞的制备过程如表1所示。 表1 CAR-T疗法治疗乳腺癌的靶点汇总HER2人表皮生长因子受体2（Human epidermal growth factor receptor 2，HER2）是研究最广泛的乳腺癌分子之一，20%-25% 的乳腺癌患者HER表达升高。HER2的过度表达与乳腺癌转移和复发率较高有关。自1998年FDA批准曲妥珠单抗以来，使用单克隆抗体的特异性彻底改变了HER2阳性乳腺癌的主流治疗理念。虽然HER2 靶向疗法已广泛应用于乳腺癌患者，并取得了良好的治疗效果，但耐药性仍限制了其对患者的治疗效果。构建的HER2靶向CAR-T细胞能主动识别肿瘤，并在肉瘤临床试验中取得了更好的疗效和安全性。Gábor等人设计了带有曲妥珠单抗衍生scFv和CD28的共刺激结构域 HER2靶向CAR-T细胞。结果显示，在这些曲妥珠单抗耐药的乳腺癌患者中，只有 7% 的CAR-T细胞在57天内实现了肿瘤完全缓解。细胞由 T 细胞组成。结果证实，少量的 CAR-T 细胞就能对抗肿瘤 HER2 抗体耐药的异种移植物产生强大的抗肿瘤作用。在另一项针对曲妥珠单抗耐药乳腺癌的研究中，以HER2为靶点的CAR-T细胞可渗入肿瘤球的核心区域，显示出肿瘤细胞的细胞毒活性，而抗HER2抗体则无效。此外，CAR-T细胞还能穿透肿瘤基质，根除曲妥珠单抗耐药乳腺癌异种移植物中的肿瘤。这项研究表明，CAR-T细胞可以通过掩蔽肿瘤表位和阻断乳腺癌肿瘤基质，有效克服抗体治疗失败的问题。同时，Saul等人通过正位异种移植模型发现，将HER2靶向CAR-T细胞送入脑部可对脑转移的乳腺癌产生较强的抗肿瘤作用，解决了肿瘤脑转移中药物难以突破血脑屏障的难题。HER3/4作为HER2的异二聚体和信号转导伙伴，HER3/HER4与乳腺癌的致癌信号转导和耐药性有关。Heregulin（HRG）是一种分泌于细胞内的可溶性生长因子，含有表皮生长因子亚域，与HER3/4受体有很高的亲和力。它能通过与特定受体结合，诱导HER酪氨酸激酶受体家族异源二聚化。HRG的这一细胞外结构域被设计用于构建HER3/4靶向的CAR-T细胞。体外实验和移植肿瘤模型发现，这些细胞能特异性识别HER3表达过高的乳腺癌细胞，并对其产生强烈的肿瘤杀伤作用。EGFR表皮生长因子受体（EGFR）是表皮生长因子受体酪氨酸激酶家族的重要成员之一，在大约一半的TNBC中被发现过表达，在乳腺癌进展和恶性转化中具有重要的调控能力。EGFR激活与表皮生长因子受体结合后，其酪氨酸激酶结构域会发生自身磷酸化，并激活下游的PI3K/AKT 信号通路。EGFR特异性CAR-T 细胞已在肺癌中显示出抗癌潜力，并在胰腺癌Ⅰ期临床试验中显示出更好的安全性和抗肿瘤效果。Xia等人发现，EGFR靶向CAR-T细胞在体外对TNBC具有特异性和较强的肿瘤杀伤能力，这种能力在异种移植小鼠模型中得到了进一步证实。机制研究证实，EGFR靶向CAR-T细胞可激活TNBC细胞中的颗粒酶-穿孔素-PARP和Fas-FADD-caspase信号通路，这可能是提高抗肿瘤效果的重要机制。在另一项研究中，Liu等人设计了两种不同类型的EGFR靶向CAR-T细胞，它们的scFv区域具有不同的DNA序列。这些CAR-T细胞能识别EGFR高表达的TNBC细胞，并能够在体外试验和异种移植小鼠模型中触发TNBC细胞死亡。MSLN间皮素（MSLN）是间充质细胞表面的一种糖蛋白。研 究发现，它的表达在包括乳腺癌在内的各种癌症中上调，这使得MSLN靶向CAR-T细胞成为乳腺癌治疗的一种潜在意。Zhang等人设计了第三代MSLN靶向CAR-T细胞，该细胞含有CD28和4-1BB共刺激结构域。在体外和体内乳腺癌异种移植模型中，MSLN 靶向CAR-T细胞特异性地破坏了MSLN阳性的乳腺癌细胞系，并显著抑制了乳腺癌肿瘤的生长。同时还发现，在CAR- T细胞存在的情况下，T细胞和细胞因子分泌水平显著增加。ICAM1细胞间粘附分子-1（Intercellular adhesion molecule-1，ICAM1）是一种细胞表面跨膜糖蛋白受体，属于免疫球蛋白超家族。研究发现，ICAM1 的功能与肿瘤细胞粘附、细胞生长信号通路以及免疫细胞向炎症部位的转运有关。与正常乳腺组织相比，ICAM 在TNBC中的表达水平更高。ICAM1特异性scFv Mg2被选为细胞外抗原结合域。体外肿瘤细胞和TNBC小鼠模型实验显示，ICAM1靶向 CAR-T 细胞具有很强的特异性破坏TNBC细胞的能力，能显著降低TNBC肿瘤的生长，提高小鼠模型的存活率。AXLAXL是一种酪氨酸激酶受体（RTK），最初是在慢性骨髓性白血病患者身上发现的。AXL 在乳腺癌细胞膜中过表达，其过表达与患者生存率降低有关。以往的研究表明，它可能与肿瘤的生理过程有关，包括增殖、凋亡、迁移、炎症和血管生成。此外，它还能激活细胞内的各种下游信号通路，如 NF-kB、MAPK、mTOR、AKT 和PI3K。Wei等人构建了AXL靶向CAR-T细胞，并在体外检测了其对AXL阳性肿瘤的抗原特异性细胞毒性和细胞因子释放能力。实验结果表明， AXL靶向CAR-T细胞在TNBC异种移植模型中具有显著的抗肿瘤能 力和更强的持久性。MUC1MUC1 是一种跨膜粘蛋白，被大量糖基化，通常在大多数腺体上上皮细胞和器官上表达。在90% 以上的乳腺癌患者中发现了的过度表达和异常糖基化。异常糖基化的MUC1（tMUC1）可以是通过合成单克隆抗体特异性识别TAB004用于乳腺癌，但不用于正常结构。Zhou等人利用 TAB004 结构作为抗原结合域设计了MUC28z嵌合抗原受体。这些类型的CAR-T细胞在识别tMUC1后能增强细胞因子和趋化因子（如Granzyme B和IFN-γ）的表达和分泌。tMUC1靶向CAR-T细胞显示出显著的细胞毒性和抗肿瘤作用，并能减少 TNBC 肿瘤在体外和异种移植模型中的增殖和生长。GD2神经节苷脂（GD2）是一种酸性糖磷脂，有两个硅铝酸残基，被确定为乳腺癌干细胞样细胞的标志物。在TNBC 中，GD2 的表达水平上调。Seitz 等人设计了一种新型 GD2靶向CAR-T 细胞，用于识别和破坏 GD2 阳性的肿瘤细胞。该CAR中scFv的构建基于地纽昔单抗beta(dinutuximab beta)，一种单克隆抗体 CH14.18）。这项研究发现，GD2-靶向CAR-T细胞的激活可介导肿瘤细胞死亡，并阻止乳腺癌的恶化和转移。FRα叶酸受体α（FRα）是一种膜结合蛋白，对叶酸具有高亲和力，具有将叶酸转运到细胞内的功能。FRa在乳腺癌细胞表面过度表达，而在正常组织中则没有，因此FRα有望成为乳腺癌的靶向抗原。Luangwattananun等人通过慢病毒系统生成了FRα靶向CAR-T细胞。当这些特异性CAR-T细胞与表达FRα的TNBC细胞共培养时，具有显著的抗肿瘤能力。此外，其细胞毒性作用在FRα表达增加的细胞中更为明显，而在 FRa 阴性的正常乳腺细胞中则没有观察到。同时，CAR-T细胞对FRα阴性的MCF10A正常乳腺细胞不产生这种特异性细胞毒性。PD-L1程序性死亡受体 1（Programmed death receptor 1 ，PD-1、CD279）和程序性死亡配体1（PD-L1）可以激活免疫细胞抑制信号，其表达通常在持续T细胞活化的肿瘤患者中。靶向PD-L1是一个有前途的靶点，在多种肿瘤的临床试验中取得了良好的效果。目前已开发出一种嵌合PD-1（chPD1）受体，可识别乳腺癌中表达的PD- L1。Parriott等人设计了ChPD1-T细胞，通过分泌IL2、IL-17、IL-21、IFN g、TNF和GM-CSF 等炎症因子以及减少炎症抑制细胞因子IL-10来识别和破坏肿瘤细胞。ChPD1-T细胞明显减轻了肿瘤负荷，延长了肿瘤小鼠的无瘤生存期。Bajor等人发现，PD-L1靶向的CAR-T细胞在PD-L1表达较 高的TNBC细胞中表现出强烈的脱颗粒反应和细胞因子产 生。低PD-L1表达的肿瘤细胞与CAR-T细胞共培养可通过 诱导肿瘤细胞上的PD-L1表达而导致肿瘤细胞清除延迟。进一步的研究证实，HER-2靶向CAR-T细胞可提高乳腺癌细胞上PD-L1的表达水平，协同增强PD-L1靶向CAR- T细胞的肿瘤杀伤功能。PTK7蛋白酪氨酸激酶7（PTK7）是受体酪氨酸激酶（RTKs）家族的重要成员，其胞内结构域可催化非活性酪氨酸激酶。PTK7的表达在乳腺癌中有所增加。我们构建了三种不同类型的PTK7特异性CAR（PTK7- CAR1/2/3），它们都含有人工修饰的PTK7特异性scFv结构域、CD8α分子跨膜结构域、CD3z 细胞内结构域序列和4-1BB 细胞内共刺激结构域。这些CAR-T细胞都能增加细胞因子的产生，并对高表达PTK7的乳腺癌产生细胞毒性，而不会对正常组织造成明显损伤。Trop2滋养层细胞表面抗原2（Trop2）是一种细胞表面糖蛋白，在TNBC中过表达，在肿瘤生长、增殖、迁移和转移 中具有重要功能。Chen等人开发了一种新型 Trop2靶向CAR-T细胞。通过体外实验，这些构建的CAR-T细胞对表达Trop2的乳腺癌细胞具有很强的肿瘤杀伤能力。在Trop2靶向CAR-T细胞中添加CD27可通过提高IL-7Ra的表达和降低PD-1的表达，提高其在肿瘤细胞和肿瘤小鼠模型中的抗肿瘤效果。SLC3A2Ansari等人发现，肿瘤相关抗原 SLC3A2（一种细胞表面蛋白）的较高表达量对肿瘤的生长起着重要作用。预示着乳腺癌的预后较差。SLC3A2靶向CAR-T细胞通过同时刺激体外 INF-g和IL-2的产生，显示出对乳腺癌肿瘤细胞的细胞毒性。在体内异种移植模型中，SLC3A2-靶向CAR-T细胞显著提高了总生存率，并减少了皮下异种移植肿瘤的生长和肿瘤负荷，且无体重减轻和细胞因子释放综合征（CRS）。B7-H3B7-H3是一种免疫检查点分子，也被称为 CD276，属于免疫检查点抑制剂 B7 超家族。Chen等人发现，B7-H3在乳腺癌中过表达，B7- H3的上调与乳腺癌的不良预后和临床结果相关，这意味着B7-H3可能是CAR-T疗法 的前瞻性靶点。Lei等人发现，以 B7-H3 为靶点的CAR-T 细胞可以特异性地损伤表达 B7-H3 的实体瘤细胞， 包括乳腺癌。同时，低剂量的组蛋白去乙酰化酶抑制剂SAHA通过增强B7-H3的表达，减少具有免疫抑制功能的CTLA-4和TET2的分泌，显著提高了体外B7-H3靶向CAR-T 细胞的抗肿瘤效果。CD70CD70是坏死因子受体超家族的重要成员，在细胞表面表达，并在多种肿瘤中广泛过表达。Yang等人设计了一种同时靶向CD70和B7-H3分子的二价串联CAR（Tan CAR）。改良后的 CAR-T 细胞能与 CD70 特异性结合，对 CD70 阳性的乳腺癌细胞具有更高的持久性和抗肿瘤能力。与单链特异性CAR-T细胞相比，当Tan CAR-T细胞作 用于同时表达两种靶抗原的乳腺癌细胞时，能提高诱导肿瘤细胞损伤和乳腺癌细胞释放细胞因子的能力。VEGRF2/3血管内皮生长因子（Vascular endothelial growth factor ，VEGF）和血管内皮生长因子受体（VEGFR）在血管生成和淋巴管生成中具有重要的生理功能，而血管生成和淋巴管生成与肿瘤细胞的生长、侵袭、迁移和转移等分子和生物学功能密切相关。阻断或干扰血管内皮生长因子和血管内皮生长因子受体（VEGFR）之间的相互作用已成为一种可能的治疗方法。VEGFR-2和VEGFR-3是血管内皮生长因子受体（VEGFR）家族的重要成员，人们设计了以VEGFR-2或VEGFR-3为靶点的CAR-T细胞，以验证它们在乳腺癌治疗中的潜力。Xing等人发现，这些CAR-T细胞通过上调INF-γ、TNF和IL-2细胞因子的产生能力，对VEGFR-2/3阳性的 乳腺癌细胞表现出很强的细胞毒性。此外，靶向VEGFR-2/3的CAR-T细胞还能显著抑制裸鼠模型中异种移植肿瘤的增殖、侵袭和转移能力，并破坏内皮细胞的管状结构。TEM8肿瘤内皮标志物8（TEM8）是一种具有高度保守整合素的糖蛋白，参与内皮细胞的侵袭和转移，最初被视为肿瘤内皮标志物。TEM8在乳腺癌细胞中表达升高，TEM8的高表达与乳腺癌的高生长、高转移和高复发率有关。TEM8靶向CAR-T细胞可分泌免疫刺激细胞因子，并在TEM8 特异性识别后通过破坏TEM8 过表达的TNBC细胞和肿瘤血管内皮细胞来阻断肿瘤血管生成。这些细胞还能诱导TNBC衍生的异种移植瘤消退，并通过靶向干细胞样乳腺癌细胞对抗乳腺小球的形成。NKG2DLsNKG2D（Natural Killer Group 2，member D）是一种在NK细胞和T细胞中高度表达的受体。NKG2D配体（NKG2DLs）经常在包括乳腺癌细胞在内的多种肿瘤细胞中上调。免疫细胞中的 NKG2D与肿瘤细胞上的NKG2DLs 相互结合，在激活免疫细胞的肿瘤杀伤效应方面发挥了重要作用。在体外，以NKG2DLs为靶点的CAR-T细胞能有效识别并清除过表达NKG2DLs的TNBC。此外，带有4-1BB或CD27分子的成本调控域可特异性增强CAR-T细胞的持久性。αvβ6整合素整合素αvβ6是异二聚体细胞表面受体家族的成员，介导细胞-细胞和细胞-细胞外基质之间的相互作用。avb6整合素在乳腺癌中上调，其过表达与癌症患者的预后有关。整合素αvβ6可激活TGFβ信号通路并促进细胞增殖和迁移、上皮-间质转化以及基质金属蛋白酶活性。通过将融合的CD28 + CD3结构域与源自口蹄疫病毒的A20肽相结合，构建了高度选择性的avb6靶向CAR-T细胞。IL-4 反应性融合基因（4αβ）在CAR-T细胞中共表达，以增加这些细胞的增殖和扩增能力和持久性体内细胞。Whilding 等人发现，αvβ6靶向CAR-T细胞在体内和体外对乳腺癌细胞具有很强的细胞毒性，而对正常 组织的损伤较小。CD32A131R抗体依赖性细胞介导的细胞毒性（ADCC）是免疫细胞杀死肿瘤细胞的常用方法。肿瘤细胞的识别和溶解过程受抗体的 Fc 片段与免疫效应细胞的FcγR结构域结合亲和力的影响。CD32 是FcγR家族的成员，由三种不同的变体 A、B和C组成，它们对Fc片段具有亲和力。CD32A131R 是根据第131位的精氨酸定义的。Caratelli等人设计了一种低亲和力嵌合受体CD32A131R，通过与西妥昔单抗交联诱导消除表皮生长因子受体过表达的乳腺癌。这些 CAR-T 细胞能有效识别特定的西妥昔单抗结合的肿瘤细胞，并通过西妥昔单抗和CAR-T细胞的结合促进INFγ和TNF的表达和分泌。 CAR-T联合疗法 尽管CAR-T细胞疗法在实体瘤治疗方面取得了重大进展，但仅靠CAR-T细胞治疗实体瘤的疗效仍然有限。因此，仍然需要有效的方法来促进CAR-T细胞疗法。多项研究表明，CAR-T细胞的持久性和杀伤肿瘤能力受多种分子或基因表达的影响。我们总结了几种将CAR-T细胞与其他分子相结合以提高疗效的前瞻性方法。HER2靶向CAR-T的联合疗法Il-21是TME中的一种细胞因子，可促进T细胞增殖并驱动T细胞记忆效应，具有防止肿瘤转移或复发的功能。Du等人发现，IL-21能增强分化不良CAR-T细胞的聚集和扩增能力，并通过增加细胞因子，有效提高HER2 靶向CAR-T细胞对HER2-表达细胞的细胞毒性。他们的研究表明，在将HER2靶向CAR-T细胞与曲妥珠单抗耐药的 HCC1954和BT474细胞结合后，IL-21的加入能显著增加对曲妥珠单抗耐药乳腺癌细胞的强细胞毒性，并促进 IFN-γ和IL-2的合成和分泌此外，Li等人还发现，抗PD1抗体可以增强HER2靶 CAR-T细胞的治疗效果。在另一项同源小鼠模型研究中，加入抗PD1抗体后，更多HER2靶向CAR-T细胞驻留在肿瘤基质中，显著提高了识别肿瘤和维持 T 细胞持久性的能力。结果表明，抗PD1抗体可以提高CAR-T细胞的肿瘤杀伤能力，并减轻肿瘤负荷。IKZF家族蛋白含有一个锌指结构域，可以识别特定的DNA序列，与其他蛋白结合，并通过重塑染色质和与RNA Pol II转录起始复合物结合来激活或抑制靶基因。在以HER2为靶点的CAR-T 细胞中敲除转录因子IKZF3，可以在不影响CAR细胞活性和功能的情况下， 通过增加 T 细胞的活化和增殖，显著提高杀伤癌细胞的能力。EGFR靶向CAR-T细胞的联合疗法聚胞苷酸（poly I:C）是一种合成的双链RNA（dsRNA）类似物。它能被dsRNA激活的toll样受体3（TLR3）和蛋白激酶（PKR）识别并结合。它可介导免疫功能，并对多种癌症具有广泛的抗肿瘤作用。EGFRVIII 靶向CAR-T细胞与Poly I: C的联合应用显著提高了CAR-T细胞对肿瘤细胞的杀伤能力，促进了IFN g和IL-2的产生和分泌。它还改善了CAR-T细胞对皮下乳腺癌移植小鼠肿瘤生长和增殖的抑制作用。同时，这种成分还能大幅减少脾脏和外周血中髓源性抑制细胞（myeloid-derived suppressor cells，MDSC）的数量，从而降低MDSC在肿瘤免疫过程中的免疫抑制作用。奥拉帕利（Olaparib）是一种口服多聚ADP核糖聚合酶抑制剂，对突变的BRCA阳性转移性乳腺癌有临床疗效。Sun等人发现，奥拉帕利通过抑制MDSC的迁移和聚集以及促进T细胞在TME中的存活和持续，可以显著提高 EGFRVIII 靶向CAR-T细胞的抗肿瘤效果。从机制上讲，奥拉帕利能阻止癌症相关成纤维细胞释放的SDF1α的表达，从而减少MDSC的迁移，从而增强 CAR-T 细胞对肿瘤的免疫效果。CDK7是转录因子TFIIH的关键组成部分，TFIIH被引入PolII附近的转录起始位点，以促进转录的启动。Xia等人发现，表皮生长因子受体靶向CAR-T细胞抗性乳腺癌细胞特别容易受到CDK7抑制剂THZ1的影响。在TNBC肿瘤模型中，THZ1与表皮生长因子受体靶向CAR- T细胞结合使用，与单独使用CAR-T细胞相比，能更好地抑制免疫抵抗，防止肿瘤增殖和转移。ROR1靶向CAR-T细胞的联合疗法受体酪氨酸激酶样孤儿受体1（Receptor tyrosine kinase-like orphan receptor 1，ROR1）是 ROR 家族中的I型跨膜受体，具有细胞外配体结合结构域和细胞内酪氨酸激酶结构域。Nicholas 等人总结说，ROR1参与抑制细胞凋亡、增强表皮生长因子受体信号通路和诱导肿瘤上皮-间质转化（EMT）。然而，ROR1 靶向CAR-T细胞对乳腺癌的疗效有限。Srivastava等人发现，奥沙利铂能激活肿瘤巨噬细胞并释放T细胞募集趋化因子，从而改善ROR1靶向CAR-T细胞的浸润。此外，奥沙利铂与抗-PD-L1联用可协同改善ROR1靶向CAR-T细胞损伤肿瘤的功能。转化生长因子（TGF）β是一种TGF-β是TME中公认的免疫抑制细胞因子，与ROR1靶向CAR-T细胞的抗肿瘤作用相关。细胞因子的产生和 ROR1 靶向 CAR-T 细胞的增殖功能在TGF-β的存在下明显受损。Tanja等人发现，通过抑制剂SD-208阻断TGF-β受体信号转导可以促进ROR1靶向CAR-T细胞的肿瘤杀伤功能。其他CAR-T细胞的联合疗法白细胞介素-7 受体（IL7R）存在于淋巴祖细胞表面， 对淋巴细胞的正常发育至关重要。研究发现，上调IL7或 IL-7受体可延长免疫细胞的存活时间并增强抗肿瘤效果。Zhao等人发现，激活IL-7受体可通过提高CAR-T 细胞在体外和体内的生长、增殖、活化和细胞毒性能力，增强传统 AX靶向CAR-T细胞的抗肿瘤功能并延长其存活时间。P38通路是一种应激活化蛋白激酶通路，也经常受到破坏，并与人类癌症的存活和迁移有关。通过CRISPR-Cas9筛选和T细胞功能测试发现，干扰P38通路可以增强T细胞的扩增能力，限制其氧化和分化压力。研究发现，P38抑制剂（P38i）能使 CAR-T 细胞更有效地进行T细胞介导的肿瘤特异性溶解，这表明P38i在提高CAR-T细胞抗肿瘤功能方面具有广阔的临床应用前景。CAR-T细胞在TME中的持久能力是阻碍其对实体瘤产生治疗效果的一个重要因素。研究发现，CD8+ T 17（Tc17）细胞和T辅助17（Th17）细胞在TME中更具持久性。一项研究发现，当STING激动剂DMXAA或cGAMP的刺激物与抗PD-1抗体结合时，Th/Tc17细胞产生的CAR-T细胞可以提高CAR-T细胞在TME中的持续能力和 肿瘤抑制作用。单细胞RNA测序表明，DMXAA能促进CAR-T细胞的转运，并通过产生趋化因子调节其在TME中的免疫效应。rAd.sT是一种靶向TGF-β信号的溶瘤腺病毒。Li等人报道，MSLN靶向CAR-T细胞与rAd.sT联合应用于乳腺癌治疗，可增加TME中细胞因子IL-6和IL-12的产生，从而产生更强的肿瘤抑制效果。 乳腺癌临床试验 在几年的乳腺癌研究中，CAR-T细胞的一些前瞻性靶点的人体试验已在世界各地得到证实，验证了该疗法的临床治疗效果和安全性。具体临床试验总结见表2。2017年 一项以c- Met 为靶点的CAR-T细胞I期临床试验（NCT01837602）在转移性乳腺癌患者中开展。在2例患者的血液和4例患者的肿瘤组织中检测到CAR的mRNA，细胞注射耐受性良好，无大于1级的相关不良反应。肿瘤被杀死后，免疫组化分析表明 CAR-T细胞在肿瘤内引起了炎症反应，导致肿瘤大面积坏死。然而，另一项以c-Met CAR-T为靶点的Ⅰ期临床试验（NCT03060356）因资金停止而终止。到目前为止，针对HER 2的CAR-T细胞疗法临床试验在乳腺癌患者中开展得最为广泛。目前共有五项1/2期临床试验。其中两项已撤销（NCT02547961）（NCT02713984），三项正在招募（NCT04650451）（NCT03740256）（NCT04430595）。此外，MUC1靶向CAR-T细胞的Ⅰ期临床研究也在广泛开展。(NCT02587689) (NCT04020575) (NCT04025216)。第1/2阶段针对 CEA的CAR-T细胞治疗CET阳性乳腺癌的临床试验也在进行中（NCT02349724）（NCT04348643）。此外，还有其他一些临床试验靶点，包括 EpCAM（NCT02915445）、NKG2DL （NCT04107142）、ROR1（NCT02706392）、CD70（NCT02830724）、C7R/GD2（NCT03635632）、CD133（NCT02541370）和CD44v6。(NCT04427449)。未来，针对乳腺癌患者的更多 CAR-T细胞临床治疗试验，以获得最佳治疗效果。表2 CAR-T细胞治疗乳腺癌的临床试验汇总 CAR-T细胞疗法面临的挑战 尽管针对实体瘤的 CAR-T 疗法已在实验室和临床中得到广泛研究，并取得了良好进展、其临床疗效仍不令人满意。如图4  所示，严重的不良反应、肿瘤细胞异质性、TME的免疫抑制以CAR-T 细胞的持久性是CAR-T细胞疗法面临的障碍。因此，在未来的研究中应开发出更好的工程策略，以提高CAR-T细胞疗法的临床疗效并减少不良反应。下面，我们将总结CAR-T细胞疗法存在的问题和可能的解决方案。图4 影响CAR-T细胞功能的挑战概要。特异性设计的CAR结构以及INF-g、tnf - α、IL-2、CCL2等促进免疫功能的细胞因子的产生和释放，有效增强了CAR- t细胞的抗肿瘤能力。TME中TAMs、MDSCs、Treg等免疫抑制性细胞的募集，TGFb、VEGF、IL-4、IL-10等免疫抑制性细胞因子的释放，以及PD-1信号的激活均可抑制肿瘤免疫。细胞外基质的异常形成和血管系统的失调也是影响CAR-T细胞的重要因素。具体目标由于CAR-T细胞识别和损伤肿瘤细胞的特定机制和特征，因此识别肿瘤细胞上表达的特定肿瘤靶标非常重要。在肿瘤细胞表面有较高的表达水平。与正常组织相比，肿瘤组织中的特异性靶标分子更多。在上一节中，我们总结了一些潜在的乳腺癌特异性靶标分子。然而，由于肿瘤细胞的异质性，大多数靶点只对特定类型的乳腺癌有效。同时，目标抗原的逃逸（即肿瘤抗原的完全或部分丢失）也是另一个巨大的问题。虽然CAR-T细胞对肿瘤细胞的初始反应率很高，但据报道，相当一部分反复注射CAR-T细胞的患者的反应率显著下降。联合识别多个靶点是克服抗原逃逸的另一种方法。二价串联CAR (Tan CAR）靶向CD70和B7-H3的研究表明，CAR-T细胞能够增强肿瘤识别能力。与此同时，一项结合了HER2、GD2和CD44v6靶点的Ⅰ期临床试验（NCT04430595）正在进行中，它能有效减少抗原逃逸，提高肿瘤细胞的识别率。治疗相关毒性神经毒性和细胞因子释放综合征（Neurotoxicity and cytokine release syndrome，CRS）是CAR-T细胞疗法最常见的两种严重和不可预测的反应。目前的研究表明，这些不良反应与CAR-T细胞分泌的大量细胞因子有关。神经毒性通常表现为癫痫发作、谵妄、记忆力减退和急性脑水肿，而CRS通常表现为发热、低血压和呼吸功能不全。在一例转移性结肠癌患者中，患者在注射HER2-靶向CAR-T细胞后15分钟内出现呼吸困难，5天后死亡。胸片和血清样本显示肺部有明显的免疫浸润。据推测，大量CAR-T细胞在输注后立即迁移到肺部，并通过识别肺上皮细胞上的低水平HER2引发细胞因子释放。免疫细胞因子（包括 IL-6、TNF-a、IL-10、GM-CSF和IFN-γ）的表达显著增加。CAR-T治疗引起的细胞因子风暴可能导致呼吸窘迫和死亡。尽管这是一份关于HER2靶向CAR-T细胞治疗结肠癌引起严重不良反应的病例报告、有效避免对正常肺组织的损伤仍是一个需要讨论和解决的问题。靶向CAR-T被广泛应用于乳腺癌治疗。因此，我们认为在乳腺癌治疗中也会出现严重的细胞因子风暴。在对CAR-T外泌体的研究中，发现纯化的CAR-T细胞外泌体表达穿孔素、颗粒酶B和细胞膜分子，包括CARs、CD3、CD8和TCRs。应用CAR-T外泌体治疗乳腺癌可有效控制毒性并提高安全性。此外，Sterner等人和Giavridis等人发现，IL-1、IL-6和GM-CSF参与了CRS的调节过程，而敲除细胞因子编码基因或特定的细胞因子抑制剂可显著减少CRS的发生。此外，自杀基因通过小分子介导的活化过程导致细胞死亡的Caspase9蛋白被引入CAR-T细胞，作为避免CAR-T细胞不可预测的治疗 反应的一种新的可能机制。将修饰的Caspase9蛋白融合到人 FK506 结合蛋白（FKBP）中，可有效、特异性地消除表达自杀基因的CAR-T细胞，而不影响正常 CAR-T 细胞的生长和增殖，从而减少对正常组织的损伤。糖皮质激素是一种强效抗炎药物，它能有效缓解患者的脑部炎症和血管源性CAR-T细胞疗法引起的水肿症状。Kloss等人发现，CAR-T细胞识别肿瘤细胞上的不同抗原可有效提高肿瘤识别的特异性，减少对正常细胞的损伤。基于这一 观点，Srivastava 等人设计了逻辑门控ROR1靶向CAR-T细胞。合成的Notch（ynNotch）受体可识别肿瘤上的EpCAM或B7-H3。ROR1 CAR的表达是由synNotch受体激活诱导的。在乳腺癌研究中，这种策略对ROR1+乳腺癌有抗肿瘤作用，而对正常组织无毒性反应。CAR-T细胞的增殖和持久性CAR-T细胞的增殖和持续能力往往与抗肿瘤效果直接相关。CAR-T细胞中某些基因的功能会影响其持久性。如上所述，在CAR的结构中加入共刺激结构域是显著提高CAR-T细胞增殖和持久性的传统方法。Agnes等人发现，集落刺激因子-1（CSF-1）通过与癌细胞中由c-fms基因编码的CSF-受体结合，与免疫细胞增殖有关。c-fms基因通过基因修饰在T细胞中表达。CSF-1的加入刺激了通过分泌IF和IL-2，CAR信号的增殖效应不会影响这些基因修饰细胞的细胞毒性。在另一项研究中，Bouche等人报告说，CD28亚域突变的CAR-T细胞具有更好的存活率和功能。通过对CD28亚域的无效突变，与T细胞耗竭相关的各种基因，如Nfatc1、Nr42a和Pdcd1的表达明显减少。此外，有几种转录因子被认为是T细胞衰竭的诱导因子。Khan等人发现，TOX可通过驱动衰竭T细胞的表观遗传重塑，将具有抗肿瘤功能的效应T细胞转化为无功能的衰竭。TCF-1是另一种可通过介导Eomes和c-Myb的表达来调控衰竭T细胞转化的转录因子。转录因子NR4A的激活与PD-1 TIM3等免疫抑制分子的表达有关。敲除NR4A后，CAR-T细胞显示出更强的肿瘤杀伤活性和更好的持久性。此外，包括干细胞记忆T（TSCM）细胞、幼稚T细胞和中枢记忆T（TCM）细胞在内的分化不良T细胞亚群具有很强的增殖能力。在构建CAR-T细胞时，利用这些细胞设计CAR-T细胞是延长CAR-T细胞在患者体内的增殖和持久性并增强其抗肿瘤活性的有效方法。肿瘤微环境的免疫抑制作用免疫逃避是抗肿瘤免疫疗法面临的一大挑战，它直接决定了肿瘤免疫的有效性。TME中细胞因子和趋化因子的变化是影响免疫逃避的重要因素。抗肿瘤免疫激活过程会释放大量细胞因子。TME中趋化因子的表达模式发生了变化，优先招募和抑制炎症细胞类型，避免招募抗肿瘤免疫细胞。这一生理过程导致了大量免疫抑制细胞的存在。免疫抑制细胞包括MDSCs、TAMs和Treg细胞。包括MDSCs、TAMs和Treg细胞在内的免疫抑制细胞被细胞因子在TME中招募，这是免疫抑制效应的关键原因。此外，Binnewies等人认为趋化因子和TME中的细胞因子，包括IL-4、IL-10、TGFβ和血管内皮生长因子，可直接抑制T细胞效应，改善免疫抑制细胞的聚集。同时，聚集的抑制细胞还会分泌大量免疫抑制细胞因子，通过正反馈过程进一步增强免疫抑制效应。这是一种通过促进免疫增强基因的表达和细胞因子的分泌来增强CAR-T细胞免疫反应的常用方法。Adachi等人发现在小鼠模型中，CAR-T细胞中IL-7和CCL19基因的上调可改善 T细胞或树突状细胞对实体瘤组织的侵袭，促进肿瘤消退。此外，CAR-T 细胞中IL-18和IL-12基因的过度表达可激活内源性免疫细胞，增强抗肿瘤反应。研究表明，INF-g、TNFa和IL-2等细胞因子可增强CAR-T细胞的抗肿瘤功能。TME中T细胞免疫抑制信号的激活是CAR-T细胞疗法一个重要障碍。PD-1/PD-L1是乳腺癌中特征最明显、研究最多的信号之一。以往的研究表明，抑制PD-1信号可对包括乳腺癌在内的各种肿瘤患者产生显著的临床疗效。PD-1信号的激活会诱导CAR-T细胞的耗竭和失活。抗PD1抗体明显改善了靶向 HER2 CAR-T细胞的抗肿瘤作用。有形障碍癌症相关成纤维细胞（CAF）是肿瘤组织间质中的基质细胞。它们可以促进肿瘤周围异常细胞外基质（ECM）的沉积，形成致密的纤维化环境，并限制CAR-T细胞向肿瘤组织的运输。CAF诱导的肿瘤免疫抑制效应是促进CAR-T 细胞疗效的一个障碍。TGF-β的激活过程可增强CA分泌ECM 蛋白，从而形成物理网络并限制T细胞的移动。虽然之前的研究证实，与传统抗体药物相比，HER2靶向CAR-T细胞穿透ECM的能力更强，但 TME中ECM的存在仍会阻碍CAR-T细胞识别和杀死肿瘤的能力。NOX4是TGF-β信号转导的下游分子。抑制NOX4不仅能阻TGF-β信号传导，还能阻止CAF分化，从而减少EMC蛋白分泌，促进免疫细胞浸润肿瘤组织。Caruana等人报告说，体外操T细胞后，肝素酶（HPSE）表达不足，这可能是降解和穿透 ECM能力下降的原因。HPSE能降解ECM的主要成分硫酸肝素蛋白多糖。表达HPSE GD2-靶向CAR-T细胞被设计用于增强降解ECM的能力，促进T细胞对肿瘤（包括乳腺癌细胞）的侵袭和抗肿瘤活性。血管系统失调肿瘤的血管系统往往会发生重塑，出现严重的血管异常和功能障碍。免疫细胞从血管到实体瘤的穿透性受损，导致CAR-T细胞的抗肿瘤效果减弱。肿瘤组织中的血管系统失调和内皮能量不足会降低细胞间粘附分子1（ICAM1）和粘附分子 VCAM1 的表达水平，从而限制T细胞在肿瘤组织中的浸润。同时，肿瘤血管系统正常化可增强组织血液灌注，从而改善CAR-T细胞的浸润和存活能力，促进CAR-T细胞的抗肿瘤能力。贝伐单抗是一种针对血管内皮生长因子的人源化单克隆抗体，不仅能抑制新生血管的萌发，还能使血管系统恢复正常。同时，贝伐单抗还能抑制细胞粘附分子的下调过程，提高CAR-T细胞对肿瘤的侵袭能力。Xing等人设计了靶向VEGFR2/3的CAR-T细胞，并在乳腺癌治疗中取得了显著效果，为抗肿瘤形成和抗血管生成提供了新思路。将CAR-T细胞直接注射到肿瘤部位，使其远离血管运输系统，是另一种有效的治疗策略。与静脉注射相比，腹腔注射 CAR-T 细胞治疗间质间皮瘤可获得更好的反应和耐受性，这为 CAR- T 细胞的局部注射治疗提供了新的前景。 未来展望 CAR-T 细胞在血液肿瘤中的成功应用，使其成为实体瘤治疗中一种前景广阔的方法。此外，美国食品和药物管理局批准 CAR-T 细胞用于临床应用，也大大促进了 CAR- T 细胞疗法在实体瘤治疗中的探索。目前已制造出多种以乳腺癌相关抗原为靶点的 CAR-T 细胞，以发挥更好的乳腺癌治疗效果。虽然CAR-T细胞疗法在体外和体内都表现出了显著的抗肿瘤功能，但治疗相关的严重毒性、T细胞持久性较差以及TME中的免疫抑制等问题仍然阻碍着它在乳腺癌和其他实体瘤中的临床应用。此外，值得注意的是，包括单克隆抗体和ADC在内的分子靶向疗法在乳腺癌方面也取得了很好的疗效s。此外，与 CAR-T 细胞疗法相比，这类药物的制备和临床应用更为方便。然而，曲妥珠单抗和帕妥珠单抗等单克隆抗体对 HER2 表达的乳腺癌细胞的杀伤作用仍取决于免疫细胞的活性，表位掩蔽和立体阻碍导致的耐药性仍是需要妥善解决的一大难题。此外，ADC依靠抗体识别肿瘤细胞并携带细胞毒性药物杀死肿瘤细胞。肿瘤细胞的特异性识别、抗体与药物的脱钩以及耐药性仍然阻碍着ADC药物在乳腺癌中的广泛应用。CAR-T细胞能直接识别和破坏肿瘤细胞，从而有效避免了抗体疗法所面临的困难。因此，在未来CAR T细胞治疗仍是治疗乳腺癌不可或缺的有效方法。END